El complejo respiratorio bovino en terneras lecheras

Álvaro García

Las dos principales causas de pérdidas por muerte en terneras antes del destete son las diarreas y el complejo respiratorio bovino (CRB). Las vaquillas que sobreviven tienen una baja productividad como vacas adultas. El complejo respiratorio en terneras se caracteriza por irritación y respuesta inflamatoria del tracto respiratorio superior. Cuando no se trata, a menudo evoluciona a bronconeumonía. La enfermedad inicialmente ha sido reconocida como de naturaleza viral, secundariamente complicada por bacterias. Esta interacción viral-bacteriana se acelera por factores del entorno de las terneras y/o su estado inmunitario.

Un componente crítico para abordar el CRB es identificar sus causas. El tratamiento efectivo debe determinarse mediante la identificación correcta de los patógenos, ya que se desaconseja el uso indiscriminado de antibióticos para combatir las bacterias secundarias. La toma de muestras del tracto respiratorio se recomienda cada vez más, incluyendo hisopos nasofaríngeos profundos, lavados transtraqueales y lavado broncoalveolar no endoscópico. La reacción en cadena de la polimerasa (PCR) también se está volviendo popular, con las principales ventajas de que se pueden analizar los virus y las bacterias, por su alta sensibilidad es posible analizar muestras agrupadas de un grupo de terneras. Sin embargo, para evitar este costoso problema, es importante abordar tanto los factores de riesgo predisponentes como los patógenos específicos.

Factores predisponentes

Calostro y medio ambiente. Para sobrevivir a los desafíos microbianos que ocurren inmediatamente después del nacimiento, las terneras deben tener una inmunidad adecuada. Antes de que se desarrolle su sistema inmune, dependen de la inmunidad pasiva transferida de la vaca a través del calostro. Las terneras deben recibir entre 3 y 4 litros de calostro de alta calidad dentro de 1 hora después del nacimiento y 3 litros adicionales dentro de las 12 horas. Un método para verificar si el calostro proporcionó inmunidad adecuada es medir las inmunoglobulinas directamente o la proteína total en el suero sanguíneo. La proteína total en suero medida con un refractómetro está altamente correlacionada con los niveles de IgG en plasma. Al menos el 80 por ciento de esas terneras deben tener niveles de proteína sérica de 5.5 g/dL o superior. Si bien la administración oportuna del calostro es crítica, también lo es el manejo adecuado, ya que el calostro puede ser un medio de crecimiento ideal para las bacterias. Es fundamental refrigerar o congelar lo antes posible si no se va a utilizar de inmediato. La pasteurización en la granja es una alternativa que no afecta las inmunoglobulinas. Los pasteurizadores discontinuos usan temperaturas relativamente más bajas y un tiempo de calentamiento más prolongado (60 °C durante 60 y 120 minutos).

Es conveniente criar terneras en establos cerrados, el único problema es que el aire estacionario y cálido puede contener gases potencialmente dañinos (es decir, amoníaco), olor, polvo y microorganismos (p. esporas de hongos, virus y bacterias). El amoníaco irrita los alvéolos de los pulmones y el polvo a menudo transporta microbios que alcanzan los tejidos respiratorios y se multiplican. Otros factores que aumentan el riesgo del CED son el alojamiento compartido con las vacas durante la primera semana de vida, que tienen una diferencia de edad de más de dos meses en un grupo, episodios previos de diarrea y dejar a las terneras con las madres durante más de 24 horas después del parto. Las instalaciones limpias y secas son críticas para reducir la incidencia del CED. Para reducir el número de bacterias, aumente el área del corral (3 m2 o más/ternera) y disminuir la temperatura del corral. La temperatura fría del establo (5 °C) es beneficiosa ya que el crecimiento bacteriano se reduce en condiciones de frío. Las terneras sometidas a condiciones de frío comerán más pienso de arranque, manteniendo buenas tasas de crecimiento. La ventilación adecuada (¡sin corrientes de aire!) reducirá el recuento de bacterias y el amoníaco. Para hacrb frente a las bajas temperaturas, las terneras necesitan una nutrición adecuada y una superficie seca y bien aislada para descansar. Las características deseadas en el encamado de suelo para terneras son una buena absorción de humedad y la capacidad de mantener el cuerpo caliente. La paja de trigo permite que el ternero “anide” y tiene la temperatura superficial más cálida en comparación con las cáscaras de arroz y las virutas de madera. ¡La arena es la más limpia pero también la más fría!

Factores determinantes

Microorganismos. Suponiendo que las terneras hayan recibido inmunidad adecuada a través del calostro, el siguiente paso importante es reducir el desafío microbiano. Para lograr esto, retire la cría de la vaca lo antes posible. Coloque las terneras en sus propios corrales individuales que los ayuden a evitar el contacto de nariz a nariz con otras terneras. Esto ayudará a los animales a lidiar con el estrés al reducir la exposición a los patógenos de la vaca y otras terneras. Debe haber suficiente encamado seco que proporcione comodidad y aislamiento del frío. Asegúrese de evitar materiales de cama polvorientos (p. serrín) ya que el polvo irrita el tracto respiratorio y facilita el ataque de bacterias.

Numerosas vacunas están disponibles para las terneras para prevenir la diarrea vírica bovina (DVB). Tradicionalmente se piensa que los anticuerpos que el ternero recibe a través del calostro generalmente hacen que las vacunas administradas sean ineficaces. Investigaciones recientes indican que las vacunas virales vivas modificadas estimulan una respuesta protectora a pesar de la incapacidad de medir una respuesta activa de anticuerpos en el torrente sanguíneo. Un ejemplo es el uso de vacunas intranasales IBR/Pi3 en terneras de menos de 1 mes de edad. Otro trabajo ha demostrado que las vacunas de DVB de virus vivos modificados proporcionan inmunidad cuando se administran a terneras desde las seis semanas de edad. Poco se ha publicado sobre la efectividad de las vacunas contra los agentes patógenos de la neumonía bacteriana como Pasteurella multocida, Mannheimia hemolytica o Mycoplasma bovis cuando se administran a terneras jóvenes.

Un artículo reciente (Pardon et al., 2020), por ejemplo, intentó identificar los factores de riesgo específicos de patógenos para virus y bacterias involucrados en brotes epidémicos del CRB. Como era de esperar, este estudio mostró que el CRB epidémico alcanzó su punto máximo en invierno y fue inicialmente de origen viral. El coronavirus bovino (BCoV) fue el virus más prevalente (cada vez más reconocido universalmente como el factor principal), seguido del virus sincitial respiratorio bovino (bRSV). En los rebaños participantes, el 36.8% reportó solamente una enfermedad respiratoria epidémica, mientras que el 63.2% reportó una enfermedad respiratoria endémica. En el momento del muestreo el 44.0 ± 30.1% de las terneras tenían CRB para rebaños de tipo epidémico y endémico.

Se detectaron virus en un 58.6% de la siguiente manera: 29.4% de bRSV, 8.1% de Parainfluenza-3 (PI-3) y 38.4% de coronavirus bovino (BCoV). Múltiples virus estuvieron involucrados en el 13.3% de los rebaños, pero solo 4 rebaños mostrando bRSV como el único patógeno. La prevalencia de bacterias fue 41.2% de M. haemolytica, 89.1% de P. multocida, 36.4% de H. somni y 33.3% de M. bovis. En el 61.0% de los brotes positivos de M. bovis, también se detectó un virus (72.0% BCoV, 16.0% PI-3 y 12.0% bRSV).

Factores de riesgo específicos de virus y bacterias

Los factores asociados con un bRSV positivo fueron días con signos clínicos antes del muestreo, porcentaje de terneras con signos respiratorios, enfermedad respiratoria endémica, vacunación contra bRSV, lavado broncoalveolar positivo para PI-3 y estación. En invierno (diciembre-marzo), el bRSV fue significativamente más frecuente en comparación con el verano y la primavera.

Para las bacterias, hubo asociaciones entre el resultado positivo para M. haemolytica y el tamaño del grupo en el establo, el tipo de cama y el resultado positivo para BCV. El análisis de H. somni identificó asociaciones positivas con la vacunación contra M. haemolytica, el tipo de cama y el tamaño del rebaño. Finalmente, para M. bovis, los animales recientemente adquiridos presentes en el mismo espacio aéreo fueron el factor más significativo.

El coronavirus bovino todavía se considera como el principal iniciador de infecciones respiratorias secundarias del CRB en terneras. En este estudio, este virus se asoció con M. haemolytica. Otro virus detectado fue el bRSV a pesar de las altas tasas de vacunación observadas en estas granjas. El virus PI-3 no se detectó con frecuencia como agente único, pero siempre se asoció con bRSV. A pesar de M. bovis, generalmente reconocido como un patógeno crónico, en este experimento a menudo se detectó en brotes agudos. En un tercio de los rebaños, M. haemolytica y H. somni, estuvieron presentes con P. multocida apareciendo solo como ubicuo. Los grupos más grandes de terneras (más de 5) tuvieron más prevalencia de M. haemolytica. El uso de serrín fue un factor de riesgo tanto para M. haemolytica como para H. somni. El serrín es conocido por irritar el tracto respiratorio y cuando está mojado, puede empeorar el estrés por frío como se explicó anteriormente. Los rebaños vacunados y no vacunados tuvieron una incidencia similar de los patógenos. Los autores plantearon la hipótesis de que, en lugar de prevenir la infección, las vacunas reducen la excreción y los signos clínicos.

Se concluyó que las infecciones virales continúan predisponiendo al complejo CRB. También se observó que bRSV tenía un papel importante en los brotes del CRB, particularmente durante el invierno. El coronavirus bovino en este experimento se asoció con la M. haemolytica. Adema, es importante para los profesionales de la salud animal considerar los efectos de los diferentes materiales de encamado.

Referencia

Pardon, J. Callens, J. Maris, L. Allais, W. Van Praet, P. Deprez, and S. Ribbens. 2020. Pathogen-specific risk factors in acute outbreaks of respiratory disease in calves. J. Dairy Sci. 103:2556–2566.

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